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单克隆抗体多个关键质量属性的评估 和可比(恒温恒湿高低温试验箱)

2021-12-10 19:12:12 废气处理设备 浏览数:3257
在进行变性和二硫键还原后,加入133mmol/L碘乙酰胺(室温下40分钟)对游离的半胱氨酸进行烷基化。VOC接下来,使用RP-W小柱对样品进行蛋白质纯化应用,并在37°C下进行胰蛋白酶过夜酶解(蛋白质与蛋白酶比例20:1,w:w)。恒温恒湿高低温试验箱使用C18反相柱执行AssayMAPBravo肽段纯化方案(脱盐)。结果与讨论C端赖氨酸截短由于羧肽酶的活性,重链C端赖氨酸的截短是常见的PTM。通过阳离子交换色谱(CEX)可以很好地分离C端赖氨酸异构体(含赖氨酸和不含赖氨酸)。图 1A显示了使用AgilentBioMAbPEEK色谱柱分析mAb1获得的电荷异构体图谱的高分离度分离和三个不同的峰。13.11分钟处的峰记为主峰(M)。

摘要:基于多属性方法 (MAM) 的 LC/MS 肽谱分析在生物制药分析领域受到了广泛的关 注。本应用简报展示了使用 LC/MS 肽谱分析方法对不同单克隆抗体 (mAb) 的关键质 量属性 (CQAs) 进行的表征和定量分析。将肽谱分析结果与传统方法进行了比较,结 果表明,肽谱分析与传统方法对赖氨酸截短、氧化、脱酰氨基化、N 端环化和糖基 化程度的估算高度相似


前言:单克隆抗体 (mAbs) 来自正处于快速生长 期的生命系统。由于其生物来源,这些复 杂分子在生产过程中会经历各种翻译后 修饰 (PTMs),从而导致明显的异质性。 在 mAbs 的开发和生产过程中,将这些 意外修饰作为 CQAs 进行表征和监测至关 重要。由于每种 CQA 的化学性质不同, 传统上有几种检测方法可执行此分析,每 种技术都有各自的优缺点。近年来,基于 LC/MS 的多属性方法 (MAM)[1] 获得了广 泛的应用,因为它有望提供一种对 mAb CQAs 进行全面表征的单一方法,与传统 方法相比,该方法可有效节省分析时间和 成本。然而,在将 MAM 方法应用于严格 监管的质量控制环境之前,必须先验证传 统分析方法与肽谱分析结果的对应准确 性。重要的是确保肽谱分析工作流程可提 供与传统分析方法相当的结果。本研究比较了肽谱分析方法与传统分析 方法(包括离子交换色谱法、亲水相互 作用色谱法 (HILIC) 和亚基水平反相色谱 法)的性能。使用由 Agilent AssayMAP Bravo 液体处理平台、Agilent  1290 Infinity II 液相色谱系统和 Agilent 6545XT AdvanceBio LC/Q-TOF,以及用于数据分 析的 Agilent MassHunter BioConfirm 软件 组成的一体化工作流程对 mAbs 进行了肽 谱分析。比较了肽谱分析方法与传统分析 方法对各 CQA 的相对 (%) 定量结果。


实验部分:材料 mAb1、mAb2 和 mAb3 购自当地经销商 (新加坡),并根据制造商的使用说明进 行储存。三羟甲基氨基甲烷、Tris-HCl、 盐酸胍、三(2-羧乙基)膦 (TCEP)、碘乙 酰胺 (IAA)、甲酸、三氟yi酸、磷酸二氢 钠、磷酸氢二钠、氯化钠和 LC/MS 级溶 剂购自 Sigma-Aldrich。IdeS 蛋白酶购自 Genovis。高品质测序级胰蛋白酶来自安 捷伦科技公司。


实验方法 电荷异构体:将样品直接进样,无需稀释 (10 mg/mL)。表 1 和表 2 列出了 mAb1 和 mAb2 针对弱阳离子交换 (WCX) 色谱 法的色谱参数。对收集的 WCX 馏分进行 了胰蛋白酶酶解和肽谱分析。 氧化:将 5 µL mAb 样品(2 mg/mL,溶于 Tris-HCl 缓冲溶液)加入 5 µL IdeS 蛋白酶 中,30 °C 下孵育 30 分钟,冷却至室温 后进行分析。 游离多聚糖:使用 AssayMAP Bravo 液体 处理系统和 GlykoPrep 快速 N-糖试剂盒 (GPPNG-PC) 进行标记 N-糖样品前处理[2]。 通过 HILIC 实现标记 N-糖的分离。 胰蛋白酶酶解 将收集的 WCX 样品和 mAb 样品馏分还 原/烷基化,并用胰蛋白酶酶解,然后 使用 Agilent AssayMAP Bravo 液体处理 平台对其进行脱盐处理[3]。恒温恒湿高低温试验箱简而言之, 将含有 mAbs 的样品板复溶于变性缓冲 液(含 5 mmol/L TCEP 和 150 mmol/L Tris 的 8 mol/L 盐酸胍,pH 8)中,并 在 60 °C 下温育 60 分钟。然后将样品酸化并用 1.75% TFA 进行稀释。

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恒温恒湿高低温试验箱随后,通过 AssayMAP 试剂转移工具使用 0.1% 甲 酸对样品进行酸化,以终止胰蛋白酶的 活性。

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赖氨酸残基的丢失 会减少 mAbs 的净正电荷,从而导致电 荷异质性。恒温恒湿高低温试验箱早洗脱和晚洗脱峰分别称为酸性 异构体(A1 和 A2)和碱性异构体(B1、 B2、B3、B4、B5 和 B6)。图 1A 的表格 列出了主峰、酸性电荷异构体和碱性电荷 异构体的峰面积百分比。在通过 LC/MS 肽谱分析表征 C 端赖氨酸截短之前,将 电荷异构体峰收集作为单个馏分,并将 多次进样的结果进行合并。恒温恒湿高低温试验箱基于肽谱分 析,使用 C 端赖氨酸截短异构体对 CEX 峰进行标注。

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通过羧肽酶 B (CPB) 处理, 进一步证实了 C 端赖氨酸的异质性。由 电荷异构体峰的面积百分比计算得到的 C 端赖氨酸截短的相对含量为 58.28%


在基于肽谱分析的 C 端赖氨酸异构体图 谱定量中,对 mAb1 进行了 LC/MS 肽谱 分析。恒温恒湿高低温试验箱图 1B 所示为 mAb1 的 LC/MS 肽 谱分析结果。MS/MS 分析确认了修饰和 未修饰重链 C 端赖氨酸截短肽的归属, 并鉴定得到其相对含量为 55.30%。 表 3 所示为传统 CEX 和肽谱分析方法用 于 C 端赖氨酸截短异构体定量的比较。恒温恒湿高低温试验箱 两种方法估算的 C 端赖氨酸截短的相对 含量相当。

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